P·01 Produkte / Immunprofilierung

TC8 — Anti-CD8 für tumorinfiltrierende Lymphozyten in Hellfeld- und Multiplex-IHC.

Klon TC8 · Kat.-Nr. DIA-TC8 · T-Zell-Korezeptor CD8, membranöses Färbemuster

Wissenschaftlicher USP

5 klonspezifische peer-reviewte Publikationen

2.652Auswertbare Tumoren

84Tumorentitäten

3.988Tumoren · CD8/Ki67-Multiplex · digital quantifiziert

Hellfeld- + Multiplex-IHC
Membranöses CD8 · humane FFPE-IHC

Der Klon TC8 weist den höchstmöglichen Signal-zu-Hintergrund-Kontrast auf und eignet sich besonders zum Nachweis von CD8+ TILs in Multiplex-Assays.

Klon TC8 – validiert für die Untersuchung tumorinfiltrierender CD8-positiver T-Zellen in FFPE-Gewebe.

ONCOdianova-Startseite und CD8-Galerie · Datenblatt 25.02.2025/08 · IHC-Galerie · Protokolle · Publikationen — Fallzahlen wie in den jeweiligen klonspezifischen Studien berichtet.

TC8 (DIA-TC8) ist ein monoklonaler Maus-Anti-CD8-Antikörper (Klon TC8, ONCOdianova GmbH), der für den immunhistochemischen Nachweis von CD8 in humanem FFPE-Routinegewebe entwickelt und validiert wurde – zur Untersuchung CD8-positiver Lymphozyten in der Tumormikroumgebung. Dokumentiert mit Tonsille als Positivkontrolle, sechs Färbeprotokollen für automatisierte Plattformen und manuelle Verfahren sowie 36 Originalabbildungen von ONCOdianova aus 17 Tumorarten. Klon TC8 wurde in fünf begutachteten Studien verwendet, die mehrere tausend humane Tumorproben in Hellfeld- und Opal-Multiplex-IHC mit digitaler Quantifizierung umfassen. Dokumentierte Anwendungen: IHC an FFPE-Gewebe (Datenblatt), Fluoreszenz-Multiplex-IHC (ONCOdianova-Startseite und -Produktseite) und Western Blot (ONCOdianova- Produktdokumentation).

Wirt / IsotypMaus · IgG2a/κ
ReaktivitätHuman
AnwendungenIHC an FFPE-Gewebe · Multiplex-Fluoreszenz-IHC · Western Blot
IHC-Ausgangsbereich1:100 – 1:200
PositivkontrolleTonsille · membranös
Format500 µl (DIA-TC8) · 100 µl (DIA-TC8-M), lyophilisiert

Produktdaten ansehen IHC-Galerie IHC-Protokolle Bestellung Kontakt

Datasheet_TC8_anti-CD8 MSDS

Produktabbildung des ONCOdianova-Anti-CD8-Antikörpers Klon TC8: CD8-Immunhistochemie mit dichtem Infiltrat CD8-positiver Lymphozyten in einem Adenokarzinom der Prostata — Produktabbildung · Klon TC8 · DIA-TC8

Evidenzebene 01

Klonspezifisches Datenblatt und Protokolle

Das Datenblatt DIA-TC8 (Version 25.02.2025/08; Produktinhalt identisch mit Version 22.02.2022/09) dokumentiert Identität, Immunogen, Formulierung, Rekonstitution, Lagerung, IHC-Ausgangsbereich, Tonsillenkontrolle, membranöses Muster, drei automatisierte Plattformen und vier Abbildungen. Die ONCOdianova-Produktdokumentation ergänzt sechs Färbeprotokolle.

Evidenzebene 02

Fünf klonspezifische Publikationen

Blessin et al. 2020 und Eichenauer et al. 2021 (automatisierte Hellfeld-IHC, 1:200), Fraune et al. 2020 (manuelle IHC, 1:450) und zwei Opal-Multiplexstudien mit Ki67 (Blessin et al. 2021, Aging und Cellular Oncology; DIA-TC8 1:200, Opal 690) — Klon TC8, digitale Quantifizierung mit HALO/ImageScope.

Evidenzebene 03

Dokumentierte Anwendungen und Abbildungen

Hellfeld-IHC und Fluoreszenz-Multiplex-IHC an humanem FFPE-Gewebe, Western Blot laut ONCOdianova-Produktdokumentation; 36 Galerieabbildungen, das Produktbild der ONCOdianova-Produktdokumentation, die vier Datenblatt-Abbildungen und ein CD8 × CD112R/PVRIG-Multiplex der Tonsille, in dem der Anti-CD8-Klon benannt ist.

Hellfeld-, Datenblatt- und Multiplex-Galerie: Abschnitt P·03 ↓

P·02 Technische Daten

Kontrollierte Produktdaten.

Produkt	Anti-CD8 (Human) aus Maus — monoklonaler Maus-Anti-T-Zell-Marker (zytotoxische T-Zellen), Klon TC8 (Datenblatt-Titel)
Klon	TC8 (monoklonal)
Katalognummern	DIA-TC8 (500 µl) · DIA-TC8-M (100 µl) — beide im Datenblatt geführt; die ONCOdianova-Produktdokumentation nennt DIA-TC8, 500 µl
Katalognummer Vertrieb	ODN-DIA-TC8 (BIOZOL)
Produktkategorie	Cancer Immunology IHC marker
Target	CD8 — T-Zell-Oberflächenglykoprotein CD8, Korezeptor des T-Zell-Rezeptors auf zytotoxischen T-Zellen (Datenblatt: CD8). Registereinträge: α-Kette CD8A, Gene ID 925, UniProt P01732; β-Kette CD8B, Gene ID 926, UniProt P10966
Immunogen	Rekombinantes Peptid des humanen CD8
Isotyp	Maus IgG2a/κ
Wirtsspezies	Maus
Reaktivität	Human
Konjugation	Unkonjugiert
Format	Lyophilisiertes Pulver; Antikörper aus Kulturüberstand gereinigt; die ONCOdianova-Produktdokumentation nennt 100 µg pro Fläschchen
Rekonstitution	DIA-TC8 mit sterilem destilliertem Wasser auf 500 µl auffüllen (DIA-TC8-M auf 100 µl); 10 Minuten vorsichtig schütteln
Formulierung	PBS, pH 7,4, 1 % BSA, 0,05 % Natriumazid
Anwendungen	IHC an Standard-FFPE-Schnitten (Datenblatt: IHC-P) · Fluoreszenz-Multiplex-IHC (ONCOdianova-Produktdokumentation und Startseite; zwei klonspezifische Publikationen) · Western Blot (ONCOdianova-Produktdokumentation)
IHC-Ausgangsbereich	1:100 – 1:200 (Datenblatt, allgemeine Empfehlung); 1:200 in den Plattformprotokollen und 1:100 im manuellen Mikrowellenprotokoll der ONCOdianova-Produktdokumentation; 1:200 und 1:450 in den publizierten Studien (studienspezifisch); optimale Verdünnung vom Anwender für Gewebe, Fixierung, Plattform und Detektionssystem zu bestimmen
Epitopdemaskierung	Hitzeinduzierte Epitopdemaskierung erforderlich (Datenblatt); pH 9 in den Plattformprotokollen (Dako Autostainer Link 48: 15 min / 95 °C; Leica Bond RX: 15 min / 100 °C; Ventana Discovery Ultra: 24 min / 100 °C), pH 7,8 mit Autoklav (121 °C, 5 min) oder Mikrowelle in den manuellen Protokollen (ONCOdianova-Produktdokumentation)
Inkubation Primärantikörper	Dako Autostainer Link 48: 20 min; Leica Bond RX: 15 min; Ventana Discovery Ultra: 60 min / 38 °C; manuelle Protokolle: 60 min / 37 °C (ONCOdianova-Produktdokumentation, Abschnitt P·04)
Positivkontrolle	Tonsille
Färbemuster	Membranös (CD8-positive Lymphozyten)
Automatisierte Plattformen	Ventana Discovery Ultra, Leica Bond RX, Dako Autostainer Link 48 (Datenblatt); Plattformprogramme auf der ONCOdianova-Produktdokumentation; Dako Autostainer Link 48 auch in zwei publizierten Studien
Lagerung	Lyophilisiert bei 2–8 °C; langfristig bei −20 °C (mindestens ein Jahr stabil); rekonstituiert kurzfristig bei 2–8 °C (mehrere Wochen); wiederholtes Einfrieren und Auftauen vermeiden
Assoziierte Antikörper	DIA-TG1 (Anti-TIGIT, Klon TG1) · DIA-R12 (Anti-CD112R/PVRIG, Klon R12) — wie im Datenblatt gelistet
Alternative Bezeichnungen	CD8, Cluster of Differentiation 8, T-cell surface glycoprotein CD8 alpha chain, T-lymphocyte differentiation antigen T8/Leu-2, Leu2, Leu2 T lymphocyte antigen, T cell antigen Leu2, T8 T cell antigen, MAL, OKT8 T cell antigen, T cell co receptor, CD8a, CD8A — Liste des Vertriebspartners BIOZOL (ODN-DIA-TC8)
Hersteller / Marke	ONCOdianova GmbH
Status	Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung in diagnostischen Verfahren.

Die technischen Angaben oben sind im Datenblatt DIA-TC8 (Version 25.02.2025/08) dokumentiert, dessen Produktinhalt mit der Version vom 22.02.2022/09 identisch ist, sowie – wo angegeben – auf der ONCOdianova-Produktdokumentation; Gen- und Proteineinträge verlinken auf die jeweiligen Register. Jedes Labor validiert seine eigenen Bedingungen.

P·03 IHC-Galerie

Klon TC8 – validiert für die Untersuchung tumorinfiltrierender CD8-positiver T-Zellen in FFPE-Gewebe.

IHC-Abbildungen und Legenden zum CD8-Nachweis in mehreren Tumoren.

Hellfeld-IHC mit Klon TC8 — ONCOdianova-CD8-Galerie (36)

Sechsunddreißig Originalabbildungen von ONCOdianova aus der ONCOdianova-Galerie „Clone TC8 validated for studying tumor infiltrating CD8 positive T cells in FFPE tissues“ (Prostata, Lunge, Ösophagus, Magen, Ovar, Vulva, Cervix, Vagina, Niere, Harnblase, Leber, Kolonadenom, Anus, Pankreas, Schilddrüse, Thymus, Mundhöhle).

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – dichtes Infiltrat CD8-positiver Lymphozyten in einem Adenokarzinom der Prostata; Abbildung 01 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 01
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Dense infiltrate of CD8 positive lymphoyctes in adenocarcinoma of the prostate.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – von CD8-positiven Lymphozyten infiltriert in einem Adenokarzinom der Prostata; Abbildung 02 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 02
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.2: Adenocarcinoma of the prostate infiltrated by CD8 positive lymphocytes.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – ausgeprägte Infiltration durch CD8-positive Lymphozyten, überwiegend zwischen den Tumorzellen mit direktem Kontakt zu neoplastischen Zellen in einem Adenokarzinom der Lunge; Abbildung 03 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 03
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.3: Adenocarcinoma of the lung with marked infiltration by CD8 positive lymphocytes. Lymphocytes are predominantly located between cancer cells with immediate contact to neoplastic cells.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – sehr hohe Dichte CD8-positiver Lymphozyten in einem Adenokarzinom des Ösophagus; Abbildung 06 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 06
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.6: Very high density of CD8 positive lymphocytes in an adenocarcinoma of the esophageus.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten überwiegend im Tumorstroma in einem Adenokarzinom des Ösophagus; Abbildung 07 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 07
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.7: CD8 positive lymphocytes are predominantly located in the tumor stroma in this adenocarcinoma of the esophageus.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – mäßig dichte Infiltration durch CD8-positive Zellen in einem Magenkarzinom vom intestinalen Typ; Abbildung 08 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 08
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.8: Intestinal type gastric cancer with a moderately dense infiltration of CD8 positive cells.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – relativ wenige CD8-positive Zellen in einem Magenkarzinom vom intestinalen Typ; Abbildung 09 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 09
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.9: Intestinal type gastric cancer containing relatively few CD8 positive cells.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – nur wenige CD8-positive Lymphozyten in einem muzinösen Ovarialtumor; Abbildung 10 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 10
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.10: Only few CD8 positive lymphocytes in a mucinous ovarian tumor.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten in einem endometrioiden Ovarialkarzinom; Abbildung 11 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 11
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.11: CD8 positive lymphocytes in an endometroid ovarian cancer.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – verstreute CD8-positive Lymphozyten, überwiegend an der Stroma-Epithel-Grenze in einem Plattenepithelkarzinom der Vulva; Abbildung 13 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 13
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.13: Scattered CD8 positive lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the vulva are predominantly located at the stroma-epithelium interface.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten, in diesem Fall überwiegend im Tumorstroma in einem Plattenepithelkarzinom der Cervix uteri; Abbildung 14 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 14
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.14: CD8 positive lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the cervix uteri. In this case, lymphocytes are predominantly located in the cancer stroma.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten, in diesem Fall sowohl im Tumorstroma als auch innerhalb der Tumorzellnester in einem Plattenepithelkarzinom der Cervix uteri; Abbildung 15 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 15
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.15: CD8 positive lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the cervix uteri. In this case, lymphocytes are located both in the cancer stroma in within cancer cell nests.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – sehr dichte lymphozytäre Infiltration in einem Plattenepithelkarzinom der Cervix uteri; Abbildung 16 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 16
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.16: Squamous cell carcinoma of the cervix uteri with very dense lymphocytic infiltration.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten in einem Plattenepithelkarzinom der Vagina; Abbildung 17 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 17
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten (Datenblatt: membranöse Darstellung).

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – sehr dichte Infiltration durch CD8-positive Lymphozyten in einem Plattenepithelkarzinom der Vagina; Abbildung 18 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 18
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.18: Vaginal squamous cell carcinoma with very dense infiltration of CD8 positive lymphocytes.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – wenige CD8-positive Lymphozyten in einem papillären Nierenkarzinom; Abbildung 19 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 19
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.19: Papillary kidny cancer with few CD8 positive lymphocytes.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – mäßig dichte Infiltration durch CD8-positive Lymphozyten in einem klarzelligen Nierenkarzinom; Abbildung 20 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 20
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.20: Clear cell kidney cancer with moderately dense infiltration of CD8 positive lymphocytes.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten in einem Nierenkarzinom; Abbildung 21 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 21
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten (Datenblatt: membranöse Darstellung).

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – nur wenige verstreute CD8-positive Lymphozyten in einem klarzelligen Nierenkarzinom; Abbildung 22 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 22
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.22: Clear cell kidney cancer with only few scattered CD8 positive lymphocytes.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – hohe Zahl CD8-positiver Lymphozyten, regelmäßig an der Peripherie der Tumorzellverbände angeordnet in einem klarzelligen Nierenkarzinom; Abbildung 23 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 23
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Clear cell kidney cancer with high number of CD8 positive lymphocytes. CD8 positive cells are regularly arranged at the periphery of tumor cell sheets.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – einige verstreute CD8-positive Lymphozyten in einem papillären nicht-invasiven Urothelkarzinom der Harnblase; Abbildung 24 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 24
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.24: Some scattered CD8 positive lymphocytes in a papillary non-invasive urothelial carcinoma of the urinary bladder.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten, mäßige Dichte in einem Leberzellkarzinom; Abbildung 26 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 26
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.26: CD8 positive lymphocytes in liver cell cancer (moderate density).”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten in einem niedriggradigen tubulären Adenom des Kolons; Abbildung 27 der ONCOdianova-CD8-Galerie (Legende der ONCOdianova-Produktdokumentation).
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 27
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Legende der ONCOdianova-Produktdokumentation.
ONCOdianova-Legende: “Fig.27: CD8 positive lymphocytes in a low grade tubular adenoma of the colon.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten in einem Kolonadenom; Abbildung 28 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 28
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten (Datenblatt: membranöse Darstellung).

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – verstreute CD8-positive Lymphozyten in einem Plattenepithelkarzinom des Anus; Abbildung 29 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 29
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.29: Anal squamous cell carcinoma with scattered CD8 positive lymphocytes.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten in einem papillären Schilddrüsenkarzinom; Abbildung 33 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 33
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.33: CD8 positive lymphocytes in a papillary carcinoma of the thyroid.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – dichte Infiltration durch CD8-positive Lymphozyten in einem papillären Schilddrüsenkarzinom; Abbildung 34 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 34
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten wie in der Quelllegende beschrieben (Datenblatt: membranöse Darstellung). Gewebe laut Quelllegende.
ONCOdianova-Legende: “Fig.34: Dense infiltration of CD8 positive lymphocytes in a papillary carcinoma of the thyroid.”

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten in einem Thymom; Abbildung 35 der ONCOdianova-CD8-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Abbildung 35
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten (Datenblatt: membranöse Darstellung).

Produktbild der ONCOdianova-Produktdokumentation (1)

Leitbild der ONCOdianova-Produktdokumentation DIA-TC8 (EN und DE) und Vorschaubild der ONCOdianova-CD8-Seiten, gezeigt aus der Originaldatei.

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Gewebe – CD8-positive Lymphozyten; Produktbild der ONCOdianova-Produktdokumentation DIA-TC8 und Vorschaubild der ONCOdianova-CD8-Seiten.
Technische Angaben & Quelle
Produktbild
TC8-Immunhistochemie an humanen FFPE-Schnitten; CD8-Signal der Lymphozyten (Datenblatt: membranöse Darstellung). Die Quelle zeigt dieses Bild ohne Legende und ohne Gewebeangabe.

Datenblatt-Abbildungen A–D (1)

Der vierteilige Bildblock des Datenblatts DIA-TC8 (Adenokarzinom der Lunge, seröses Ovarialkarzinom, klarzelliges Nierenkarzinom, tubuläres Kolonadenom), in den Fassungen 2022 und 2025 identisch.

Immunhistochemischer Nachweis von humanem CD8 mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8) in FFPE-Routinegewebe – Abbildungen A–D des Datenblatts: A Adenokarzinom der Lunge mit ausgeprägter Infiltration durch CD8-positive Lymphozyten; B dichtes Infiltrat CD8-positiver Lymphozyten in einem serösen Ovarialkarzinom; C klarzelliges Nierenkarzinom mit hoher Zahl CD8-positiver Lymphozyten; D CD8-positive Lymphozyten in einem niedriggradigen tubulären Adenom des Kolons.
Technische Angaben & Quelle
Datenblatt A–D
TC8-Immunhistochemie an FFPE-Routinegewebe (Datenblatt: membranöse Darstellung). Vierteiliger Bildblock aus dem Datenblatt DIA-TC8 (Version 25.02.2025/08; identisch in der Fassung von 2022); das Datenblatt nennt als Bildquelle Prof. Guido Sauter, Institut für Pathologie, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf.
ONCOdianova-Legende: “A: Adenocarcinoma of the lung with marked infiltration by CD8 positive lymphocytes. B: Dense infiltrate of CD8 positive lymphocytes in a serous carcinoma of the ovary. C: Clear cell kidney cancer with high number of CD8 positive lymphocytes. D: CD8 positive lymphocytes in a low grade tubular adenoma of the colon.”

Fluoreszenz-Multiplex-IHC: CD8 × CD112R/PVRIG (1)

Originalabbildung B des Datenblatts DIA-R12, die den CD8-Kanal DIA-TC8 zuordnet.

Fluoreszenz-Multiplex-Immunhistochemie einer normalen humanen Tonsille mit Anti-CD8-Klon TC8 (DIA-TC8; orange/rot) und Anti-CD112R/PVRIG-Klon R12 (DIA-R12; grün), Zellkerne blau – Überlagerung mit Detaileinschub; Abbildung B des Datenblatts DIA-R12 und Abbildung 01 der ONCOdianova-CD112R-Galerie.
Technische Angaben & Quelle
Multiplex 01
Fluoreszenz-Multiplex-IHC mit Anti-CD8 (DIA-TC8, rot) und Anti-CD112R (DIA-R12, grün); Abbildung B des Datenblatts DIA-R12. Dasselbe Gesichtsfeld wird auf der R12-Seite mit R12-Legende gezeigt.
ONCOdianova-Legende: “Multiplex immunohistochemistry of a normal human tonsil with anti-CD8 (DIA-TC8 / red) and anti-CD112R (DIA-R12 / green)”

Alle 39 Abbildungen und Legenden sind Originalmaterial von ONCOdianova: 36 Abbildungen aus der ONCOdianova-CD8-Galerie („Clone TC8 validated for studying tumor infiltrating CD8 positive T cells in FFPE tissues“), das Produktbild der ONCOdianova-Produktdokumentation, der vierteilige Bildblock des Datenblatts und eine Multiplexabbildung des Datenblatts DIA-R12, die DIA-TC8 benennt.

P·04 IHC-Protokolle & publizierte Anwendungen

IHC-Protokolle und publizierte Anwendungen.

ONCOdianova-Protokoll

Dokumentierte ONCOdianova-Protokolle — sechs Verfahren

Für den Klon TC8 sind sechs Färbeverfahren dokumentiert: drei automatisierte Plattformen, zwei manuelle Verfahren (Karten unten) und eine manuelle Zweifarben-Immunfluoreszenz (Block B). Jede Verdünnung wird mit ihrem zugehörigen Verfahren dargestellt.

Dako Autostainer Link 48

Vorbehandlung: 15 Min. · 95 °C · pH 9
Primärantikörper: 1:200 · 20 Min. · Raumtemperatur
Linker: nein
Detektion: HRP-Polymer · 20 Min. · Raumtemperatur

Leica Bond RX

Vorbehandlung: 15 Min. · 100 °C · pH 9
Primärantikörper: 1:200 · 15 Min.
Post Primary: 8 Min.
Detektion: HRP-Polymer · 8 Min.

Ventana Discovery Ultra

Vorbehandlung: 24 Min. · 100 °C · pH 9
Primärantikörper: 1:200 · 60 Min. · 38 °C
Sekundärantikörper: 12 Min. · 36 °C
Detektion: HRP-Polymer · 12 Min.

Manuell — Autoklav

Vorbehandlung: 121 °C · 5 Min. · pH 7,8
Primärantikörper: 1:200 · 60 Min. · 37 °C
Detektion: EnVision HRP rabbit/mouse · 30 Min. · 37 °C

Manuell — Mikrowelle

Vorbehandlung: 90 s bei 1000 W bis zum Kochen, dann 15 Min. · 270 W · pH 7,8
Primärantikörper: 1:100 · 60 Min. · 37 °C
Detektion: EnVision HRP rabbit/mouse · 30 Min. · 37 °C

Quelle: ONCOdianova-Produktseite DIA-TC8, Reiter „IHC Protokoll“ — „Staining protocols for anti-human CD8 antibody clone TC8“. Die Werte gelten je Verfahren; das Datenblatt DIA-TC8 nennt als Ausgangsbereich 1:100–1:200 und steht getrennt in Block A unten.

Externe publizierte Anwendung

Manuelle Hellfeld-IHC — Fraune et al.

Antikörper: Klon TC8
Verdünnung: 1:450
Verfahren: manuell
Antigendemaskierung: Autoklav · 121 °C · 5 Min. · Tris-EDTA-Citrat · pH 7,8
Primärinkubation: 60 Min. bei 37 °C
Detektion: EnVision Kit (Dako)

Fraune C. et al., Annals of Surgical Oncology 2020;27(10):3997–4006 · doi:10.1245/s10434-020-08209-y

Externe publizierte Anwendung

Automatisierte Hellfeld-IHC — Blessin et al. 2020

Antikörper: Klon TC8
Verdünnung: 1:200
Antigendemaskierung: DAKO PT-LINK · 98 °C · 15 Min. · Target Retrieval Solution S2367 · pH 9
Plattform: DAKO Link 48
Peroxidaseblock: 5 Min.
Primärinkubation: 20 Min. bei Raumtemperatur
Detektion: Flex HRP 20 Min. · DAB 10 Min. · Hämatoxylin 5 Min.

Blessin N.C. et al., Cellular Oncology 2020;43(3):421–430 · doi:10.1007/s13402-020-00496-7

Externe publizierte Anwendung

Multiplex-Fluoreszenz-IHC — Blessin et al. 2021

CD8: Oncodianova · Klon TC8 · Cat# DIA-TC8
Antigendemaskierung: pH 9,0
Verdünnung: 1:200
Färbeposition: 2
Fluorophor: Opal 690

Blessin N.C. et al., Aging 2021;13(11):14590–14603 · doi:10.18632/aging.203113 — Tabelle 5, Zeile CD8.

Die dargestellten Protokolle und publizierten Workflows sind dokumentierte Anwendungsbeispiele aus den jeweils genannten Quellen; die dokumentierten Bedingungen bieten praktische Ausgangspunkte für die laborspezifische Etablierung von DIA-TC8-Abläufen.

Drei dokumentierte Anwendungskontexte: das aktuelle Datenblatt (A), die sechs Protokolle der ONCOdianova-Produktdokumentation für automatisierte Plattformen und manuelle Verfahren (B) und die in den klonspezifischen Studien berichteten Bedingungen (C). Jede Verdünnung wird mit ihrem zugehörigen Verfahren und Detektionssystem dargestellt. Die dokumentierten Bedingungen bieten praktische Ausgangspunkte für die laborspezifische Etablierung von TC8-IHC-Abläufen.

A · DatenblattImmunhistochemische Färbung von Standard-FFPE-SchnittenDatenblatt DIA-TC8 · Version 25.02.2025/08 (wortgleich Version 22.02.2022/09)

Vorbereitung und Epitopdemaskierung

Rekonstitution: DIA-TC8 mit sterilem Aqua dest. auf 500 µl auffüllen (DIA-TC8-M auf 100 µl), 10 Minuten vorsichtig schütteln
Entparaffinieren und rehydrieren nach Standardverfahren
Hitzeinduzierte Epitopdemaskierung (HIER) ist erforderlich

Primärantikörper und Detektion

Antikörper 1:100–1:200 einsetzen (IHC-P, allgemeine Empfehlung)
Detektion wahlweise: indirekte Immunenzymmarkierung mit Sekundärantikörper-Konjugat, Biotin/(Strept)Avidin-basiert, löslicher Enzym-Immunkomplex oder polymerbasiert
Für automatisierte Plattformen geeignet (Datenblatt: Ventana Discovery Ultra, Leica Bond RX, Dako Autostainer Link 48); die Plattformprogramme stehen in Block B
Positiv- und Negativkontrollen parallel mitführen; Positivkontrolle: Tonsille; erwartetes Muster: membranös

Das Datenblatt verweist für IHC-Protokolle auf www.oncodianova.com (Block B).

B · ONCOdianova-ProduktdokumentationSechs Färbeprotokolle: Dako, Leica, Ventana, manuell (Autoklav, Mikrowelle), Zweifarben-ImmunfluoreszenzONCOdianova-Produktseite DIA-TC8, Abschnitt „IHC protocols“ (Stand 30.08.2026)

Dako Autostainer Link 48

Vorbehandlungspuffer: 15 min / 95 °C / pH 9
Inkubation Primärantikörper: 20 min / Raumtemperatur, Verdünnung 1:200; Linker: nein
HRP-Polymer: 20 min / Raumtemperatur

Leica Bond RX

Vorbehandlungspuffer: 15 min / 100 °C / pH 9
Inkubation Primärantikörper: 15 min, Verdünnung 1:200
Post Primary: 8 min; HRP-Polymer: 8 min

Ventana Discovery Ultra

Vorbehandlungspuffer: 24 min / 100 °C / pH 9
Inkubation Primärantikörper: 60 min / 38 °C, Verdünnung 1:200
Sekundärantikörper: 12 min / 36 °C; HRP-Polymer: 12 min

Manuelle Färbung mit Autoklav

Vorbehandlungspuffer: 121 °C / 5 min / pH 7,8
Inkubation Primärantikörper: 60 min / 37 °C, Verdünnung 1:200
EnVision HRP rabbit/mouse: 30 min / 37 °C

Manuelle Färbung mit Mikrowelle

Vorbehandlungspuffer: 90 s bei 1000 W bis zum Kochen, dann 15 min / 270 W / pH 7,8
Inkubation Primärantikörper: 60 min / 37 °C, Verdünnung 1:100
EnVision HRP rabbit/mouse: 30 min / 37 °C

Manuelle Zweifarben-Immunfluoreszenz

Position 1: Antikörper bei pH 9; Position 2: CD8
Vorbehandlungspuffer: 90 s bei 1000 W bis zum Kochen, dann 15 min / 270 W / pH 9
Inkubation Primärantikörper: 30 min / Raumtemperatur, Verdünnung 1:200; HRP-Polymer: 10 min / Raumtemperatur

Die Produktseite nennt zusätzlich die Rekonstitution auf 500 µl.

C · Publizierte StudienbedingungenHellfeld-IHC (Autostainer und manuell) und Opal-Multiplex — publizierte AnwendungskontexteDrei Studien mit TC8-spezifischen Bedingungen (Methodenteile)

C1 · Automatisierte Hellfeld-IHC, Dako Autostainer Link 48 (Blessin et al. 2020)

FFPE-Gewebemikroarrays; Epitopdemaskierung PT Link, pH 9, 15 min bei 98 °C
Peroxidaseblock 5 min; „Oncodianova, mouse monoclonal antibody, Clone TC8, dilution 1:200“, 20 min bei Raumtemperatur
EnVision Flex HRP 20 min, DAB 10 min, Hämatoxylin 5 min; Digitalisierung Leica Aperio VERSA 8 (40×), Auswertung HALO bzw. ImageScope, CD8-positive Zellen/mm²

C2 · Manuelle Hellfeld-IHC (Fraune et al. 2020, Pankreaskarzinom)

Epitopdemaskierung: Autoklav 5 min bei 121 °C, Tris-EDTA-Citrat-Puffer pH 7,8
„Oncodianova, mouse monoclonal antibody, Clone TC8, 1:450“, 60 min bei 37 °C; Dako EnVision; digitale Zellzählung

C3 · Opal-Multiplex-Immunfluoreszenz (Blessin et al. 2021, Aging)

Position 2: CD8 „Oncodianova, Clone: TC8, Cat#: DIA-TC8“, Demaskierung pH 9,0, 1:200, Opal 690 (Tabelle 5)

Die Verdünnungen 1:200 und 1:450 gehören zu den jeweils beschriebenen Verfahren (Plattform, Demaskierung, Inkubationszeit und Detektion); der Datenblatt-Ausgangsbereich beträgt 1:100–1:200. Die Publikationen nennen „Oncodianova“ als Bezugsquelle.

P·05 Leitfaden zur Interpretation

So liest man die Färbung.

Erwartetes Muster

Membranös, CD8-positive Lymphozyten

Das Datenblatt beschreibt eine membranöse Darstellung mit Tonsille als Positivkontrolle. Die ONCOdianova-Abbildungen zeigen CD8-positive Lymphozyten als verstreute, mäßige oder dichte Infiltrate im Tumorstroma, an der Stroma-Epithel-Grenze oder zwischen Tumorzellen in Karzinomen aus 14 Organen, in einem neuroendokrinen Tumor des Pankreas, in einem Kolonadenom und in einem Thymom, ohne Färbung der Tumorzellen in den gezeigten Gesichtsfeldern. Im publizierten Normalgewebepanel von Blessin et al. 2020 waren Blutgefäße der Milz der einzige eindeutig CD8-positive nicht-lymphatische Zelltyp.

Dokumentierter Validierungsumfang

Produktvalidierung und dokumentierte Anwendung

Klon TC8 wurde speziell für den routinemäßigen immunhistochemischen Nachweis von CD8 in FFPE-Gewebe entwickelt und für die Identifizierung CD8-positiver tumorinfiltrierender T-Zellen (TILs) validiert, um den Nachweis von CD8 in der Tumormikroumgebung zu ermöglichen, einschließlich einer Validierung für den Nachweis CD8-positiver TILs in Multiplex-Assays und einer Optimierung des Signal-zu-Hintergrund-Kontrasts. Fünf begutachtete Studien setzten unabhängig Klon TC8 in der Hellfeld-IHC an 2.652 Tumoren aus 84 Entitäten mit 608 Normalgeweben, an 1.163 Nierentumoren und an 551 Pankreaskarzinomen sowie DIA-TC8 in der Opal-Multiplex-IHC mit Ki67 an 3.988 Tumoren aus sechs Krebsarten und an Normal-, Entzündungs- und kolorektalem Gewebe ein, jeweils mit digitaler Quantifizierung.

Forschungseinsatz

Forschungsinterpretation der CD8-Färbung

TC8 stellt den CD8-Korezeptor auf der Oberfläche CD8-positiver Lymphozyten in humanen FFPE-Schnitten dar. CD8-positive T-Zellen sind die klassischen zytotoxischen Effektorzellen,[1] und tumorinfiltrierende CD8-positive T-Zellen umfassen phänotypisch unterschiedliche Populationen, einschließlich Bystander-Zellen.[2] Forschende können Dichte und räumliche Verteilung CD8-positiver Lymphozyten zusammen mit Morphologie und Gewebekompartiment und – je nach Forschungsfrage – mit weiteren Markern auswerten; die publizierten Multiplexstudien kombinierten TC8 mit Ki67, um die Proliferation CD8-positiver Zellen zu erfassen.

P·06 Target-Hintergrund

CD8 in der Forschung.

CD8 und Klon TC8 — Reaktivitätstext des Datenblatts

Reaktivitätstext des Datenblatts DIA-TC8 (Version 25.02.2025/08; wortgleich in Version 22.02.2022/09), in englischer Originalfassung.

Clone TC8 has been developed specifically for routine immunohistochemical (IHC) detection of CD8 in formalin-fixed paraffin-embedded tissue specimen. TC8 has been validated for the identification of CD8 positive tumor infiltrating T cells (TILs) in order to allow the detection of CD8 in the tumor microenvironment under pathological conditions.

The T-cell receptor (TCR) recognizes specific antigenic peptides on the surface of cancer and other target cells presented by HLA-I/β2m complexes. Binding to TCR induces a signalling transduction cascade, leading to execution of cytotoxic T lymphocyte (CTL) functions. Thus, CD8+ T cells are directly involved in antitumor cytotoxic responses, while inhibitory T-cell receptors such as PD-1, CTLA-4 and TIGIT are activated by the immunosuppressive tumor microenvironment with the aim to inactivate tumor-infiltrating lymphocytes (TILs). The most effective current cancer immunotherapies include immune checkpoint inhibition ICI and block T-cell inhibitory receptors. Moreover, effective blockade immunotherapy appears to be associated with the presence of CD8+ T cells.

CD8 und Klon TC8 — ONCOdianova-Produktinformation

Produktinformation der ONCOdianova-CD8-IHC-Galerie und des Abschnitts „Reaktivität“ der ONCOdianova-Produktdokumentation.

Der CD8-Antikörper Klon TC8 wurde speziell für den immunhistochemischen (IHC) Nachweis von CD8 in menschlichen FFPE-Routine-Gewebeproben entwickelt. Klon TC8 wurde für einen optimalen Signal-Rausch-Kontrast optimiert und für die Identifizierung von CD8+-tumorinfiltrierenden T-Zellen (TILs) validiert, mit dem Ziel, einen unübertroffenen spezifischen Nachweis von CD8 in der Tumormikroumgebung zu ermöglichen.

CD8+ T-Zellen spielen eine zentrale Rolle bei der Vernichtung von Krebszellen. Sie haben die Fähigkeit, verschiedene menschliche Tumore zu infiltrieren und sind an der Entwicklung eines spezifischen Tumormikroumfelds beteiligt. Krebszellen haben Mechanismen entwickelt, um der Immunreaktion gegen den Tumor erfolgreich auszuweichen, indem sie hemmende Signale durch Hochregulierung der Expression immunsuppressiver Komponenten erzeugen. Eine wirksame Blockade dieser Interaktion wird als ein wichtiger Faktor bei der Entwicklung von Krebsimmuntherapien angesehen. Darüber hinaus scheinen bereits vorhandene CD8+ T-Zellen die Wirksamkeit solcher Immun-Checkpoint-Therapien vorherzusagen.

Der T-Zell-Rezeptor (TCR) erkennt spezifische antigene Peptide auf der Oberfläche von Krebs- und anderen Zielzellen, die von HLA-I/β2m-Komplexen präsentiert werden. Die Bindung an den TCR induziert eine Signaltransduktionskaskade, die zur Ausführung zytotoxischer T-Lymphozyten-Funktionen (CTL) führt. Während CD8+ T-Zellen direkt an antitumoralen zytotoxischen Reaktionen beteiligt sind, ist die Beteiligung von CD4+ T-Zellen eher indirekt, z.B. durch ihre Hilfe beim Priming von CD8+ T-Zellen.

Im Gegensatz dazu werden inhibitorische T-Zell-Rezeptoren wie PD-1, CTLA-4 und TIGIT durch die immunsuppressive Tumormikroumgebung mit dem Ziel aktiviert, tumorinfiltrierende Lymphozyten (TILs) zu inaktivieren. Zu den derzeit wirksamsten Krebsimmuntherapien gehören die Immun-Checkpoint-Inhibition ICI und die Blockierung von T-Zell-inhibierenden Rezeptoren. Darüber hinaus scheint eine wirksame Blockade-Immuntherapie mit dem Vorkommen von CD8+ T-Zellen assoziiert zu werden.

ONCOdianova-Produktdokumentation, Reiter „Reaktivität“ (die deutsche Produktseite trug den englischen Text): Clone TC8 has been developed specifically for the immunohistochemical (IHC) detection of CD8 in routine FFPE human tissue specimen. TC8 has been validated for the identification of CD8 positive tumor infiltrating T cells (TILs) with the aim to allow an unequaled specific detection of CD8 in the tumor microenvironment. IHC application of monoclonal antibody TC8 may provide valuable information for clinical research and potential therapeutic interventions targeting the tumor immunology checkpoint.

CD8 ist ein Zelloberflächenglykoprotein und Korezeptor des T-Zell-Rezeptors. Auf konventionellen zytotoxischen T-Zellen wird es als CD8αβ-Heterodimer exprimiert, kodiert durch die Gene CD8A und CD8B; CD8αα-Homodimere kommen auf weiteren Lymphozytenpopulationen vor. Der Korezeptor bindet MHC-Klasse I und unterstützt die Erkennung von Peptidantigenen, die von MHC-Klasse-I-Molekülen präsentiert werden – die Grundlage der zytotoxischen T-Zell-Antwort.[1, 7] Tumorspezifische zytotoxische T-Zell-Klone wurden aus Lungenkarzinompatienten abgeleitet,[3, 4, 5] und die Aktivierung CD8-positiver T-Zellen wird durch regulatorische T-Zellen[6] und durch die immunsuppressive Tumormikroumgebung kontrolliert.[9]

In Gewebestudien dient die CD8-Immunhistochemie der Bestimmung von Dichte und räumlicher Verteilung CD8-positiver Lymphozyten in Tumoren: Effektor-Gedächtnis-T-Zellen im kolorektalen Karzinom waren in der publizierten Kohorte mit früher Metastasierung und Überleben assoziiert,[8] und vorbestehende CD8-positive T-Zellen am Tumorrand waren in der publizierten Melanomkohorte mit dem Ansprechen auf eine PD-1-Blockade assoziiert.[11] Neoantigen-gerichtete T-Zell-Antworten und ihre Verbreiterung unter Checkpoint-Therapie sind Gegenstand aktueller Forschung.[10, 12] Der Reaktivitätstext des Datenblatts fasst diesen Kontext zusammen: Inhibitorische Rezeptoren wie PD-1, CTLA-4 und TIGIT werden in der immunsuppressiven Tumormikroumgebung aktiviert, und eine wirksame Checkpoint-Blockade scheint mit dem Vorhandensein CD8-positiver T-Zellen assoziiert zu sein.

Diese Aussagen beschreiben das Target CD8 und seinen Forschungskontext. Klonspezifische Anwendungsdaten zu TC8 stehen in den Produktdaten, den Protokollen, der Galerie, den Publikationen und im Dokumentenabschnitt dieser Seite.

GeneCD8A — NCBI Gene 925 · CD8B — NCBI Gene 926
ProteineT-Zell-Oberflächenglykoprotein CD8 α-Kette — UniProt P01732 · β-Kette — UniProt P10966
AliaseCD8 · Leu-2 · T8 · CD8α (p32) · CD8β (p37)
LokalisationZelloberflächen-Korezeptor — die Grundlage des membranösen Färbemusters
ForschungsauswertungCD8-positive Lymphozyten können nach Dichte und räumlicher Verteilung entsprechend dem Studiendesign zusammen mit Morphologie, Gewebekompartiment und ergänzenden Markern ausgewertet werden; tumorinfiltrierende CD8-positive T-Zellen umfassen phänotypisch unterschiedliche Populationen — Simoni et al. 2018 [2]
Verwandte KloneCD8 × CD112R/PVRIG-Multiplex dokumentiert mit R12; siehe auch die ONCOdianova-Anti-TIGIT-Klone TG1 und TG2

Zahlen in eckigen Klammern verweisen auf die Targetliteratur unten. Targetbiologie bleibt von klonspezifischen Produktaussagen getrennt.

P·07 Translationale Forschungsrelevanz

CD8 in der translationalen Immunonkologie-Forschung.

Target-Ebene

Translationale CD8-Forschung

CD8 ist ein zentraler Marker für die Infiltration zytotoxischer T-Zellen. Vorbestehende CD8-positive T-Zellen am Tumorrand waren in der publizierten Melanomkohorte von Tumeh et al. (2014) mit dem Ansprechen auf eine PD-1-Blockade assoziiert,[11] und die CD8-IHC wurde in gepaarten Biopsien vor und unter Behandlung in Immuntherapiestudien eingesetzt, wobei Veränderungen der Dichte CD8-positiver T-Zellen in publizierten Studienanalysen mit dem klinischen Verlauf in Zusammenhang gebracht wurden. Details: CD8 in der Forschungsübersicht.

Klon

Was sich damit untersuchen lässt

Mit dem Klon TC8 lassen sich CD8-positive tumorinfiltrierende Lymphozyten und ihre Dichte in humanem FFPE-Gewebe untersuchen — in automatisierter Hellfeld-IHC mit digitaler Quantifizierung und in der Opal-Multiplex-Immunfluoreszenz; er ist in fünf begutachteten Studien an mehreren tausend humanen FFPE-Tumoren benannt.

Target-Ebene

Translationaler Forschungskontext

Publizierte Studien liefern einen translationalen Target-Kontext für die CD8-Forschung im Tumormikromilieu und in Immuntherapiestudien.

IHC-Biomarker in der Immuntherapie-Forschung Verwandter Forschungskontext: TG1 — TIGIT · TG2 — TIGIT · FX3 — FOXP3 · R12 — PVRIG/CD112R

P·08 Publikationen

Klonspezifische Evidenz und Targetliteratur.

Klonspezifische Evidenz (Klon TC8 / DIA-TC8)

Blessin NC, Spriestersbach P, Li W, Mandelkow T, Dum D, Simon R, Hube-Magg C, Lutz F, Viehweger F, Lennartz M, Fraune C, Nickelsen V, Fehrle W, Göbel C, Weidemann S, Clauditz T, Lebok P, Möller K, Steurer S, Izbicki JR, Sauter G, Minner S, Jacobsen F, Luebke AM, Büscheck F, Höflmayer D, Wilczak W, Burandt E, Hinsch A. Prevalence of CD8+ cytotoxic lymphocytes in human neoplasms. Cellular Oncology (2020); 43(3):421–430. doi:10.1007/s13402-020-00496-7 · PMID 32141029 · PMC7214387
Automatisierte Hellfeld-IHC (Dako Autostainer Link 48, PT Link pH 9, 1:200, 20 min bei Raumtemperatur, EnVision Flex/DAB) an Gewebemikroarrays: 2.652 auswertbare Tumoren aus 84 Tumorentitäten und 608 Normalgewebe aus 76 Gewebetypen; digitale Quantifizierung CD8-positiver Zellen pro mm² (Aperio VERSA 8, HALO).Begutachteter Artikel · Klon TC8
Eichenauer T, Simmendinger L, Fraune C, Mandelkow T, Blessin NC, Kluth M, Hube-Magg C, Möller K, Clauditz T, Weidemann S, Dahlem R, Fisch M, Riechardt S, Simon R, Sauter G, Büscheck F, Rink M. High level of EZH2 expression is linked to high density of CD8-positive T-lymphocytes and an aggressive phenotype in renal cell carcinoma. World Journal of Urology (2021); 39(2):481–490. doi:10.1007/s00345-020-03200-4 · PMID 32303902 · PMC7910252
Automatisierte Hellfeld-IHC (Dako Autostainer Link 48, PT Link pH 9, 1:200, 20 min bei Raumtemperatur, EnVision Flex/DAB) an einem Gewebemikroarray mit 1.809 Nierentumoren, 1.163 für CD8 auswertbar; digitale Quantifizierung (Aperio VERSA 8, ImageScope).Begutachteter Artikel · Klon TC8
Blessin NC, Abu-Hashem R, Mandelkow T, Li W, Simon R, Hube-Magg C, Möller-Koop C, Witt M, Schmidt A, Büscheck F, Fraune C, Luebke AM, Möller K, Jacobsen F, Lutz F, Lennartz M, Steurer S, Sauter G, Höflmayer D, Tsourlakis MC, Hinsch A, Burandt E, Wilczak W, Minner S, Clauditz TS. Prevalence of proliferating CD8+ cells in normal lymphatic tissues, inflammation and cancer. Aging (2021); 13(11):14590–14603. doi:10.18632/aging.203113 · PMID 34083496 · PMC8221353
Opal-Multiplex-Immunfluoreszenz CD8 × Ki67 an FFPE-Schnitten (CD8: DIA-TC8, Demaskierung pH 9,0, 1:200, Position 2, Opal 690 — Tabelle 5): normale lymphatische Gewebe, Entzündungsgewebe, Tumoren und 765 auswertbare kolorektale Karzinome; Quantifizierung mit ImageScope/HALO.Begutachteter Artikel · DIA-TC8
Blessin NC, Li W, Mandelkow T, Jansen HL, Yang C, Raedler JB, Simon R, Büscheck F, Dum D, Luebke AM, Hinsch A, Möller K, Menz A, Bernreuther C, Lebok P, Clauditz T, Sauter G, Marx A, Uhlig R, Wilczak W, Minner S, Krech T, Fraune C, Höflmayer D, Burandt E, Steurer S. Prognostic role of proliferating CD8+ cytotoxic Tcells in human cancers. Cellular Oncology (2021); 44(4):793–803. doi:10.1007/s13402-021-00601-4 · PMID 33864611 · PMC8338812
Opal-Multiplex-Immunfluoreszenz CD8 × Ki67 an FFPE-Schnitten (CD8: Cat# DIA-TC8, Klon TC8, 1:200): 3.988 auswertbare kolorektale, Mamma-, Nierenzell-, Ovarial-, Pankreas- und Magenkarzinome; Quantifizierung mit HALO.Begutachteter Artikel · DIA-TC8
Fraune C, Burandt E, Simon R, Hube-Magg C, Makrypidi-Fraune G, Kluth M, Büscheck F, Höflmayer D, Blessin NC, Mandelkow T, Li W, Perez D, Izbicki JR, Wilczak W, Sauter G, Schrader J, Neipp M, Mofid H, Daniels T, Isbert C, Clauditz TS, Steurer S. MMR Deficiency is Homogeneous in Pancreatic Carcinoma and Associated with High Density of Cd8-Positive Lymphocytes. Annals of Surgical Oncology (2020); 27(10):3997–4006. doi:10.1245/s10434-020-08209-y · PMID 32108923 · PMC7471097
Manuelle Hellfeld-IHC (Autoklav 121 °C, 5 min, Tris-EDTA-Citrat pH 7,8; 1:450, 60 min bei 37 °C; Dako EnVision) an Gewebemikroarrays von 597 Pankreaskarzinomen, 551 für CD8 auswertbar; digitale Zellzählung. Korrektur veröffentlicht 2022 (doi:10.1245/s10434-022-11798-5): Ergänzung der Danksagung; Methoden und Ergebnisse unverändert.Begutachteter Artikel · Klon TC8

Bibliografische Angaben wie bei PubMed indexiert (Eintrag 2, Eichenauer et al., mit dem Druckjahr 2021 zitiert; die ONCOdianova-Produktdokumentation nennt die Online-Veröffentlichung 2020). Die fünf Studien stammen aus dem pathologischen Forschungsumfeld des Universitätsklinikums Hamburg-Eppendorf und dokumentieren die publizierte Verwendung des Klons TC8 in automatisierter Hellfeld-IHC, manueller Hellfeld-IHC und Opal-Multiplex-Immunfluoreszenz unter den genannten Bedingungen.

Kongressabstracts, die Datenblatt und ONCOdianova-Produktdokumentation als Referenzen für Klon TC8 führen

Blessin NC, Mandelkow T, Bady E, Hube-Magg C, Sauter G, Simon R, Fraune C, Lennartz M, Weidemann SA, Möller K, Höflmayer D. Abstract 3870: Patterns of CD112R expression in normal lymphatic tissues, inflammation and cancer. Cancer Research (Proceedings AACR Annual Meeting 2020) (2020); 80(16 Suppl):3870. doi:10.1158/1538-7445.AM2020-3870Kongressabstract
Simon R, Blessin NC, Mandelkow T, Bady E, Hube-Magg C, Sauter G, Lennartz M, Fraune C, Weidemann SA, Möller K, Büscheck F. Abstract 4970: Prognostic role of CD112R, PD-1 and Ki67 expression in CD8+cytotoxic T cells in colorectal cancer. Cancer Research (Proceedings AACR Annual Meeting 2020) (2020); 80(16 Suppl):4970. doi:10.1158/1538-7445.AM2020-4970Kongressabstract

Datenblatt und ONCOdianova-Produktdokumentation führen diese beiden AACR-2020-Abstracts unter den „specific references for clone TC8“. Beide Abstracts beschreiben CD112R-Multiplex-Immunhistochemie mit CD8 und Ki67 als Mitmarker aus demselben Hamburger Forschungsumfeld; sie werden hier als die vom Datenblatt zitierten Referenzen aufgeführt, und die begutachteten klonspezifischen Studien oben dokumentieren die publizierte Verwendung des Klons TC8.

Targetliteratur der ONCOdianova-Produktdokumentation und Übersichtsquellen dieser Seite

Zhang N, Bevan MJ. CD8(+) T cells: foot soldiers of the immune system. Immunity (2011); 35(2):161–168. doi:10.1016/j.immuni.2011.07.010 · PMID 21867926Targetbiologie · Übersicht
Simoni Y et al. Bystander CD8+ T cells are abundant and phenotypically distinct in human tumour infiltrates. Nature (2018); 557(7706):575–579. doi:10.1038/s41586-018-0130-2 · PMID 29769722Targetbiologie
Weynants P, Thonnard J, Marchand M, Delos M, Boon T, Coulie PG. Derivation of tumor-specific cytolytic T-cell clones from two lung cancer patients with long survival. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine (1999); 159(1):55–62. doi:10.1164/ajrccm.159.1.9805073 · PMID 9872818Targetbiologie
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Einträge 1 und 2 sind die Übersichts- und Einordnungsquellen dieser Seite; Einträge 3–12 sind die zehn „General references“ der ONCOdianova-Produktdokumentation, zitiert mit den bei PubMed indexierten bibliografischen Angaben. Die Literatur liefert wissenschaftlichen Kontext zu CD8-Biologie, tumorinfiltrierenden Lymphozyten und immunonkologischer Forschung.

P·09 FAQ

Häufige wissenschaftliche Fragen.

Was erkennt der Anti-CD8-Klon TC8?

TC8 ist ein monoklonaler Mausantikörper (IgG2a/κ), der gegen ein rekombinantes Peptid des humanen CD8, des T-Zell-Korezeptors des T-Zell-Rezeptors, erzeugt wurde. Er wird als Forschungsreagenz für die Immunhistochemie an humanem formalinfixiertem, paraffineingebettetem (FFPE) Gewebe angeboten und zeigt ein membranöses Färbemuster CD8-positiver Lymphozyten.

Ist TC8 für die FFPE-Immunhistochemie dokumentiert?

Ja. Das Datenblatt gibt an, dass Klon TC8 speziell für den routinemäßigen immunhistochemischen Nachweis von CD8 in FFPE-Gewebeproben entwickelt wurde, und nennt einen Ausgangsbereich von 1:100 bis 1:200. Die ONCOdianova-Produktdokumentation dokumentiert sechs Protokolle (Dako Autostainer Link 48, Leica Bond RX, Ventana Discovery Ultra, manuell mit Autoklav, manuell mit Mikrowelle, Zweifarben-Immunfluoreszenz), und 36 Originalabbildungen von ONCOdianova zeigen CD8-positive Lymphozyten in 17 Tumorarten.

Gibt es begutachtete Publikationen mit Klon TC8?

Ja. Fünf begutachtete Studien verwendeten Klon TC8 (Katalognummer DIA-TC8): Blessin et al. 2020 (Cellular Oncology; 2.652 Tumoren aus 84 Entitäten und 608 Normalgewebe), Eichenauer et al. 2021 (World Journal of Urology; Nierenzellkarzinom), Blessin et al. 2021 (Aging; CD8 × Ki67-Multiplex in Normal-, Entzündungs- und Tumorgewebe), Blessin et al. 2021 (Cellular Oncology; CD8 × Ki67-Multiplex an 3.988 Tumoren aus sechs Krebsarten) und Fraune et al. 2020 (Annals of Surgical Oncology; Pankreaskarzinom).

Ist TC8 für die Fluoreszenz-Multiplex-IHC validiert?

Ja. Klon TC8 wurde für den Nachweis CD8-positiver TILs in Multiplex-Assays validiert; die ONCOdianova-Produktdokumentation nennt ein manuelles Zweifarben-Immunfluoreszenzprotokoll mit CD8 in Position 2, und das Datenblatt DIA-R12 zeigt einen CD8 × CD112R/PVRIG-Multiplex normaler Tonsille mit DIA-TC8. Unabhängig publizierte Evidenz umfasst zwei begutachtete Opal-Multiplexstudien (Blessin et al. 2021, Aging und Cellular Oncology), die DIA-TC8 mit 1:200 zusammen mit Ki67 einsetzten (Aging, Tabelle 5: Position 2, Opal 690). Jedes Panel wird vom Anwender für Gewebe, Antikörperreihenfolge, Demaskierung, Verdünnung und Detektion etabliert.

Welche Verdünnung sollte verwendet werden?

Das Datenblatt nennt 1:100 bis 1:200 als allgemeine Empfehlung für die IHC an FFPE-Schnitten. Die Plattformprotokolle der ONCOdianova-Produktdokumentation verwenden 1:200 (Dako, Leica, Ventana, manuell mit Autoklav, Zweifarben-Immunfluoreszenz) und 1:100 für das manuelle Mikrowellenprotokoll. Publizierte Studien verwendeten 1:200 (Dako Autostainer Link 48 und Opal-Multiplex) sowie 1:450 (manuelles Autoklavprotokoll, 60 min bei 37 °C). Verdünnung, Demaskierung und Inkubation gehören zusammen; die optimale Verdünnung wird vom Anwender für Gewebe, Fixierung, Plattform und Detektionssystem bestimmt.

Welche Epitopdemaskierung wird für TC8 verwendet?

Eine hitzeinduzierte Epitopdemaskierung ist erforderlich (Datenblatt). Die Plattformprotokolle verwenden pH 9 (15 min bei 95 °C für den Dako Autostainer Link 48, 15 min bei 100 °C für den Leica Bond RX, 24 min bei 100 °C für den Ventana Discovery Ultra); die manuellen Protokolle verwenden pH 7,8 mit Autoklav (121 °C, 5 min) oder Mikrowelle. Publizierte Studien verwendeten PT Link pH 9 (15 min bei 98 °C) für das automatisierte Hellfeldprotokoll, Autoklav pH 7,8 für das manuelle Protokoll und pH 9,0 für das Opal-Multiplexprotokoll.

Welche Positivkontrolle und welches Färbemuster sind zu erwarten?

Tonsille ist die im Datenblatt genannte Positivkontrolle; das erwartete Muster ist eine membranöse Färbung CD8-positiver Lymphozyten. Die ONCOdianova-Abbildungen zeigen CD8-positive Lymphozyten im Tumorstroma und zwischen Tumorzellen in Karzinomen von Prostata, Lunge, Ösophagus, Magen, Ovar, Vulva, Cervix, Vagina, Niere, Harnblase, Leber, Anus, Pankreas, Schilddrüse und Mundhöhle, in einem Kolonadenom und in einem Thymom.

Kann TC8 auf automatisierten Färbeplattformen eingesetzt werden?

Ja. Das Datenblatt nennt die Eignung für Ventana Discovery Ultra, Leica Bond RX und Dako Autostainer Link 48, und die ONCOdianova-Produktdokumentation gibt für jede Plattform ein Programm an (Abschnitt P·04). Zwei publizierte Studien verwendeten den Dako Autostainer Link 48 mit PT-Link-Demaskierung; die publizierten Multiplexfärbungen erfolgten manuell mit Opal-Reagenzien.

Welche Informationen liefert die CD8-Färbung mit Klon TC8?

Die CD8-Immunfärbung mit Klon TC8 stellt den CD8-Korezeptor auf der Oberfläche CD8-positiver Lymphozyten in humanen FFPE-Schnitten dar. Ihre Dichte und räumliche Verteilung – im Tumorstroma, an der Stroma-Epithel-Grenze oder zwischen Tumorzellen – können zusammen mit Morphologie und Gewebekompartiment ausgewertet werden; die publizierten Multiplexstudien kombinierten TC8 mit Ki67, um die Proliferation CD8-positiver Zellen zu erfassen, und weitere Marker können je nach Forschungsfrage ergänzt werden.

Was ist der dokumentierte Validierungsumfang des Klons TC8?

Klon TC8 wurde speziell für den routinemäßigen IHC-Nachweis von CD8 in FFPE-Gewebe entwickelt und für die Identifizierung CD8-positiver tumorinfiltrierender T-Zellen validiert, um den Nachweis von CD8 in der Tumormikroumgebung zu ermöglichen, einschließlich einer Validierung für CD8-positive TILs in Multiplex-Assays. Unabhängig publizierte klonspezifische Evidenz umfasst fünf begutachtete Studien mit mehreren tausend humanen FFPE-Tumorproben in Hellfeld- und Opal-Multiplex-IHC mit digitaler Quantifizierung.

Welches Format und welche Formulierung hat DIA-TC8?

DIA-TC8 ist ein lyophilisierter, aus Kulturüberstand gereinigter Antikörper, der mit sterilem destilliertem Wasser auf 500 µl rekonstituiert wird; das Datenblatt führt zusätzlich DIA-TC8-M, rekonstituiert auf 100 µl. Das Datenblatt nennt als Formulierung PBS, pH 7,4, mit 1 % BSA und 0,05 % Natriumazid; die ONCOdianova-Produktdokumentation gibt 100 µg pro Fläschchen an. Lagerung lyophilisiert bei 2–8 °C, langfristig bei −20 °C; rekonstituiert bei 2–8 °C für mehrere Wochen; wiederholtes Einfrieren und Auftauen vermeiden.

P·10 Dokumente

Datenpaket.

Datenblatt

DIA-TC8

Produktdatenblatt, Version 25.02.2025/08 (Produktinhalt identisch mit der Version vom 22.02.2022/09; aktualisierte Vertriebsadresse). Identität, Immunogen, Formulierung, Rekonstitution, Lagerung, Gebrauchsanweisung, vier Abbildungen und Referenzliste.

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PDF · Version 2025/08 · 216 KB

IHC-Galerie

CD8-IHC-Galerie

Die ONCOdianova-Galerie „CD8 IHC-Gallery“ ist in Abschnitt P·03 dieser Seite mit 36 Abbildungen und ihren Legenden integriert, ergänzt um das Produktbild der ONCOdianova-Produktdokumentation, die Datenblatt-Abbildungen und eine Multiplexabbildung.

Zur Galerie ↓

39 Abbildungen · Hellfeld, Produktbild, Datenblatt, Multiplex

Protokolle

IHC-Protokolle

Die sechs Färbeprotokolle der ONCOdianova-Produktdokumentation (Dako Autostainer Link 48, Leica Bond RX, Ventana Discovery Ultra, manuell mit Autoklav, manuell mit Mikrowelle, Zweifarben-Immunfluoreszenz) sind in Abschnitt P·04 dokumentiert.

Zu den Protokollen ↓

6 Protokolle · Abschnitt P·04

Sicherheit

MSDS

Sicherheitsdatenblatt (ONCOdianova, alle lyophilisierten Antikörper).

PDF herunterladen ↓

PDF · V02 · 216 KB

Bestellung. ONCOdianova-Produkte werden über unseren Vertriebspartner BIOZOL Diagnostica Vertrieb GmbH, Oehleckerring 11–13, 22419 Hamburg, bezogen — Bestellanfragen per E-Mail: order@biozol.de (CC info@oncodianova.com). Siehe auch Bestellinformationen.

Die technischen Daten dieser Seite stammen aus dem Datenblatt DIA-TC8 (Version 25.02.2025/08; Produktinhalt identisch mit der Version vom 22.02.2022/09) und – wo angegeben – von der ONCOdianova-Produktdokumentation. Verwandt: R12 (Anti-CD112R/PVRIG) · TG1 (Anti-TIGIT) · TG2 (Anti-TIGIT) · FX3 (FOXP3) · KK3 (CD73).

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung in diagnostischen Verfahren.